{"key":"4c85fec4-167e-479f-8dd2-6cee4b71df85","installationKey":"73ebc470-17bd-4130-a880-1be5cfb16e4d","publishingOrganizationKey":"dec5e6c9-0156-4fa0-b01c-e642dbff48fc","doi":"10.15472/qmfnqh","external":false,"numConstituents":0,"type":"OCCURRENCE","subtype":"OBSERVATION","title":"Diversidad de algas rojas en Córdoba","description":"<p>Los registros biológicos que hacen parte de este recurso fueron colectados del 4 al 6 de octubre del 2023 en el marco el proyecto de investigación Identificación morfológica y genética de algas rojas en Córdoba, Colombia, una aproximación a la diversidad ficológica. Se registraron 24 taxa agrupados en cinco ordenes (5), ocho (8) familias y 16 géneros, presentando las Rhodomelaceae el mayor número de especies.</p>","language":"spa","logoUrl":"https://gitlab.com/sib-colombia/logos/-/raw/main/socio-SiB-unicordoba.png","citation":{"text":"Mogollón Arismendy M J, Pardo Pérez E, Peña Salamanca E, Begambre Hernández M, Benito Revollo Lambertino D, Padilla Altamiranda M, Causil Noriega S, Cabrera Moreno C (2025). Diversidad de algas rojas en Córdoba. Universidad de Córdoba. 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El Porvenir) y los 8° 54’ N, 76° 26’ O (Punta Arboletes); se incluyó la zona insular (Isla Tortuguilla). Obedeciendo a la geomorfología costera, el área a monitorear se caracteriza por presentar un litoral de tipo rocoso, arenoso y areno lodoso, donde predominan los sustratos coralinos y sedimentarios, que se distribuyen de manera diferencial contribuyendo a dos ecorregiones en Córdoba, Morrosquillo y Darién (López et al. 2004). Los sectores encajan en el régimen climático del Caribe colombiano, donde en los primeros \nmeses del año, de enero a abril, en el área influyen con mayor frecuencia los vientos alisios del Noreste NE, mientras que, para los demás meses prevalecen los vientos del Suroeste SW. Se destaca la contracorriente Panamá - Colombia","designDescription":"El proyecto tuvo el objetivo de estimar la diversidad morfológica y genética de las algas Rhodophyta en el zona costera e insular del departamento de Córdoba, Colombia.","relatedProjects":[],"abstract":"Las macroalgas son productores primarios de los ecosistemas marinos, por lo que documentar su composición  y distribución es necesaria para establecer y fortalecer los inventarios de diversidad, las estrategias de conservación y uso sostenible de los recursos marinos que brindan las zonas costeras litorales. A pesar de ello, regiones como el sur del Caribe colombiano, en particular en las ecorregiones Darién y Morrosquillo, en jurisdicción del departamento de Córdoba, existe poca documentación al respecto, haciendo necesario fomentar la investigación en estas zonas, que permitan la actualización de estos datos. Dado lo anterior, esta investigación \ntiene como objetivo proporcionar una lista actualizada de las macroalgas de la zona costera de Córdoba en las ecorregiones mencionadas, basados la toma de muestras en la zona litoral, su posterior revisión morfologíca y molecular. Los taxones se organizaron y actualizaron con base en la nomenclatura más reciente.\n\nSe registraron 24 taxa agrupados en cinco ordenes (5), ocho (8) familias y 16 géneros, presentando las Rhodomelaceae el mayor número de especies. Se reporta un nuevo registro para el Caribe colombiano, correspondiente a Gracilariopsis tenuifrons y se amplía el rango de distribución de Gracilaria flabelliformis para la ecorregión Darién, así como de Crassiphycus crassissimus, Bryocladia subtilissima y Ceramium brevizonatum para el Morrosquillo. Esta investigación actualiza el inventario de algas rojas para el Caribe colombiano, resaltando la presencia de especies cripticas catalogadas como invasoras. En el presente trabajo queda evidenciado el impacto de los estudios moleculares en la ficología, información que puedes ser útil para nuevas investigaciones que incluyan la biogeografía, la sistemática y la ecología, así como aporte para la toma de decisiones en el manejo de las zonas costeras y uso sostenible de los recursos marinos."},"samplingDescription":{"studyExtent":"Se realizó el estudio en la franja costera del departamento de Córdoba, la cual se encuentra entre los 9° 25’ N, 75° 42’ O (corregimiento de El Porvenir) y los 8° 54’ N, 76° 26’ O (Punta Arboletes); se incluyó la zona insular (Isla Tortuguilla). Obedeciendo a la geomorfología costera, el área a monitorear se caracteriza por presentar un litoral de tipo rocoso, arenoso y areno lodoso, donde predominan los sustratos coralinos y sedimentarios, que se distribuyen de manera diferencial contribuyendo a dos ecorregiones en Córdoba, Morrosquillo y Darién (López et al. 2004). Los sectores encajan en el régimen climático del Caribe colombiano, donde en los primeros meses del año, de enero a abril, en el área influyen con mayor frecuencia los vientos alisios del Noreste NE, mientras que, para los demás meses prevalecen los vientos del Suroeste SW. Se destaca la contracorriente Panamá - Colombia (Durango y Santos, 2022).\n\nSe seleccionaron 10 estaciones de muestreo, dos en la localidad de San Antero ubicada en la ecorregión Morrosquillo, ocho en las localidades de Los córdobas, Puerto Escondido, Moñitos y San Bernardo del Viento pertenecientes a la ecorregión Darién y dos estaciones en Isla Tortuguilla","sampling":"La colecta se realizó en la zona intermareal y submareal, teniendo en cuenta los diferentes morfos y extrayendo los talos completos con su disco de fijación. Parte del material fue preservado en una mezcla de agua de mar con etanol al 70% (Simmons y Muñoz, 2005), otra parte del material se trasladó en silica gel para su análisis molecular y otras muestras fueron trasladadas sin fiar, para su revisión y herborización. Todos los especímenes seleccionados fueron codificados, fotografiados y escaneados, antes y después de su herborización para depositados y codificados en el Herbario de la Universidad de Córdoba.","methodSteps":["FASE DE IDENTIFICACIÓN MORFOLÓGICA\nComo fase inicial y previa a la identificación molecular, se realizó un análisis morfológico con el fin de delimitar las posibles especies. Para procesar el material colectado, las algas se lavaron con agua de mar, evaluando el estado sanitario. Para la identificación se usó literatura especializada (Won et al; 2009, Dawes and Mathieson, 2008; Littler et al, 2008; Littler and Littler, 2000; Taylor, 1960, Mogollón et al., 2021) y las bases de datos disponibles en el Fondo Mundial de Información sobre Biodiversidad (GBIF). Los nombres científicos fueron consultados y corroborados en AlgaeBase (Guiry and Guiry, 2024) y las categorías taxonómicas se organizaron de acuerdo con Wynne (2022). La información fue filtrada con la herramienta. “coincidencia de taxones” en el récord mundial de especies marinas (WoRMS, 2023) e ITIS (2024).","Para el análisis morfológico se tuvo en cuenta la forma del talo, sus dimensiones, textura y color. Los cortes histológicos se realizaron de manera transversal y longitudinal en la parte basal, media y apical del talo de 15 ejemplares, observando la disposición de las células y posible presencia de estructuras reproductivas y se fijaron en placas permanentes (Flórez et al., 2010). Se analizaron aspectos específicos de los diferentes grupos de las algas rojas como características de la rama carpogonial, número y desarrollo de filamentos de células estériles, desarrollo de los gonimoblastos, entre otras características (Fredericq y Hommersand 1989, 1989b, Hommersand y Fredericq, 1990). Todo lo anterior bajo un microscopio óptico DM500, Leica-China y estereomicroscopio con óptica apocromática Stemi 508, Carl Zeiss, Alemania y AxionVision Rel. 4.8","EXTRACCIÓN DE ADN\nLas macroalgas colectadas en campo fueron lavadas con agua destilada y secadas, para posteriormente conservarlas en gel de sílice; por dificultades y nulos resultados en la extracción de ADN a partir de tejido seco de algunos morfotipos, se procedió a realizar la extracción de ADN de tejido de algas frescas. La cantidad de tejido empleado en la extracción de ADN varió de 5 mg – 50 mg, la porción óptima de los tejidos para la extracción de ADN varió dependiendo de la muestra, su estado de conservación y la cantidad de tejido utilizable; las algas membranosas con altos contenidos de agarosas y las algas fibrosas, se les realizó la extracción de ADN a partir de 5mg de tejido seco para evitar la condensación de la solución durante la extracción, para las algas calcáreas se emplearon hasta 50 mg de tejido para obtener una cantidad suficiente de ADN. Se procedió a macerar y triturar el tejido en un mortero utilizando nitrógeno líquido, una vez pulverizada la muestra se pesó el tejido y se aplicaron los protocolos de extracción de ADN.","Las algas membranosas tuvieron éxito en la extracción de ADN mediante la aplicación de dos kits sucesivos de extracción de ADN de plantas, primero con el kit Wizard® Genomic DNA Purification Kit de Promega (Promega, Madison, WI, USA) y la muestra resultante se le aplicó el kit de extracción DNeasy Plant de Quiagen (QIAGEN, Hilden, Germany). Las algas fibrosas y calcáreas tuvieron éxito en la extracción de ADN con la aplicación del protocolo de extracción CTAB 2X (Doyle y Doyle, 1987) sumado a una purificación con \nTiocianato de Guanidina, empleando una columna de sílice comercial (JVLAB, Guangdong, China). Al ADN resultante, se le evaluó la integridad en un gel de agarosa y se conservó a -20 °C.","PCR Y SECUENCIACIÓN\nDel ADN extraído se amplificaron dos regiones del genoma algal, el gen mitocondrial COI (citocromo oxidasa I) y el gen cloroplastidial rbcL, para la amplificación del gen COI se emplearon los primers: GazF1 5′ -TCAACAAATCATAAAGATATTGG - 3′ y GazR1 5′ - ACTTCTGGATGTCCAAAAAAYCA - 3′, y para la amplificación de la región génica rbcL se emplearon dos pares de primers (R-rbcl 5'-\nGTTCTTTGTGTTAATCTCAC-3' / F577 5'-GTATATGAAGGTCTAAAAGGTGG-3' y R-rbcl 5'-GTTCTTTGTGTTAATCTCAC-3' / R753 5' GGAAGATATGTATGAAAGAGC - 3'). Las tres amplificaciones se realizaron a partir de una PCR conteniendo 25 µL DreamTaq PCR Master Mix (Thermo Scientific, Waltham, Massachusetts, U.S.), 1,75 µL de cada primer a 10 µM, 4 µL de ADN y 17,5 de agua miliQ para completar un volumen final de 50 µL, la amplificación constó de un ciclo de desnaturalización inicial de 5 minutos a 95 °C, 35 ciclos de: 30 segundos de desnaturalización a 95 °C, 30 segundos de anillamiento a 50 °C y 90 segundos de extensión a 72 °C y una extensión final de 10 minutos a 72 °C. Se verifico la amplificación en geles de agarosa al 2,5 % y se corrieron en buffer TBE 1X y los amplificados fueron enviados al Instituto de Genética de la Universidad Nacional de Colombia IGUN, en donde fueron purificados y secuenciados.  Los alineamientos obtenidos a partir de la secuenciación de las regiones génicas de las algas muestreadas se editaron con el software Chromas 2.6.6 (Technelysium, South Brisbane, Australia), se excluyeron las regiones de baja calidad con rastros de secuencias de ADN menor a 15 Phred y fueron conservadas en formato FASTA. Las secuencias fueron cotejadas con especies homólogas descritas o identificadas molecularmente como algas rojas, utilizando los genes COI y rbcL disponibles en las bases de datos de GenBank, empleando la herramienta básica de búsqueda de alineación local BLAST.","ANÁLISIS DE FILOGENIA\nSe descargaron de la base de datos del NCBI secuencias de algas relacionadas estrechamente con cada una de las regiones del ADN obtenidas en el presente trabajo. Con el software MEGA 11.0.10 (Kumar et al., 2018) se organizaron las secuencias conforme a las categorías taxonómicas de Clase, se alinearon mediante método heurístico de construcción progresiva ClustalW y se recortaron las regiones de ADN excedentes. 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