Bajo el marco del proyecto "Plan de Manejo Ambiental para la construcción y operación de las plataformas multipozo Golondrina B y Golondrina C y sus vías de acceso en el área de desarrollo Golondrina" se realizó el monitoreo y la caracterización de la calidad de las aguas superficiales los días 08, 09 y 10 de noviembre de 2024, en seis (06) puntos próximos a las Plataformas Multipozo Golondrina B y Golondrina C en el Área de Desarrollo Golondrina, localizada en jurisdicción del municipio de Puerto Gaitán en el departamento del Meta. Durante la fase de campo se adelantaron mediciones In Situ y se colectaron muestras de agua para los posteriores análisis hidrobiológicos en el laboratorio.
Este recurso contiene los datos biológicos asociados a la caracterización de las comunidades hidrobiológicas del área de estudio, en sus diferentes parámetros: plancton, perifiton, bentos, macrófitas e ictiofauna. En total, el presente recurso consta de 79 registros biológicos (6 eventos de muestreo).
El municipio con representación es Puerto Gaitán, ubicado en el departamento de Meta. El recurso se distribuye taxonómicamente en los reinos Animalia (23), Bacteria (2), Chromista (25), Plantae (24) y Protozoa (5).
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Cuenta con 11 filos, 10 clases, 17 órdenes, 25 familias, 29 géneros y 2 especies. Del total, un 78% se identificó a nivel de género y un 22% a nivel de otras categorías taxonómicas. En cuanto al reino Animalia, los registros se distribuyen en 5 filos, 3 clases, 5 órdenes, 7 familias, 7 géneros y 1 especie. 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El monitoreo fue desarrollado por el laboratorio MCS Consultoría y Monitoreo Ambiental S.A.S., el cual se encuentra acreditado ante el IDEAM mediante la Resolución 1849 del 26 de agosto de 2022, para llevar a cabo esta actividad. Los soportes de la resolución de acreditación, soportes de recolección de información, reportes de laboratorio e informe se presentan en la carpeta. Se caracterizaron las comunidades hidrobiológicas presentes en los mismos puntos donde se realizó el muestreo de los parámetros fisicoquímicos y microbiológicos de forma simultánea, teniendo presente las variaciones en sus atributos comunitarios y sus características como bioindicadores.","methodSteps":["A continuación, se describe el proceso metodológico implementado para llevar a cabo la caracterización de las comunidades hidrobiológicas.","Se efectuaron todas las actividades involucradas en la salida de campo. Después de identificar los puntos de monitoreo, se llevó a cabo la toma de muestras dependiendo de la comunidad específica a monitorear, una vez tomadas, estas fueron rotuladas y registradas correctamente en los formatos de campo incluyendo fecha y hora de muestreo, responsable de la toma, origen y estado de estas, tipo de comunidad, tipo de fijación y otras observaciones pertinentes.","Perifiton: La colecta de las muestras del perifíton, se efectuó raspando en 10 ocasiones los sustratos naturales presentes en los puntos de monitoreo (troncos, piedras y hojas en evidente estado de permanecía en el cuerpo de agua) en un área conocida (cuadrante de perifíton de 7,82 cm2) con la ayuda de un cepillo. Posteriormente, el material acumulado en las cerdas del cepillo se disolvió en un frasco ámbar fijado con alcohol al 70% y se le agregaron unas gotas de Lugol para facilitar la identificación de organismos en el laboratorio. Las muestras colectadas fueron marcadas, registradas en las planillas de campo y almacenadas en una nevera para su posterior traslado al laboratorio.","Comunidad bentónica: Las muestras fueron colectadas con una red Surber de diámetro de ojo de malla de 363 µm. En cada punto de monitoreo se definió una zona para realizar el muestreo en diferentes hábitats y sustratos hasta obtener un área total de muestreo de 0,9 m2; en cada uno de los barridos la red fue puesta sobre el sustrato con la abertura en dirección contraria a la corriente, para así barrer el fondo desplazando los sedimentos dentro del cono. El material colectado fue depositado en bolsas de seguridad, fijadas con alcohol al 70% y teñidas con Rosa de Bengala. Una vez colectadas las muestras, se rotularon y almacenaron en una nevera de icopor y se realizó su respectivo registro, cumpliendo con los requisitos expuestos en las planillas de campo.","Fitoplancton: Las muestras fueron recolectadas con la ayuda de un balde de 10 L, se tomaron aguas superficiales (entre 0,25 m a 0,3 m) y se depositaron dentro de una red para recolecta de plancton teniendo en cuenta un volumen conocido de muestra que para este caso específico fue de 100 litros; en la parte inferior la red tiene un frasco colector con poro de malla de 23 μm en el cual se concentran los organismos. Posteriormente, las muestras concentradas fueron vaciadas en frascos color ámbar y fijadas con alcohol al 70%; además, para facilitar la observación e identificación de los microorganismos se agregaron unas gotas de Lugol. Finalmente, las muestras fueron rotuladas y almacenadas en cadenas de custodia y formatos de campo.","Zooplancton: La colecta de las muestras se efectuó siguiendo la misma metodología para la toma de fitoplancton; no obstante, se usó una red de 55 μm de ojo de malla y el volumen filtrado fue el mismo que para la toma de fitoplancton. Las muestras fueron depositadas en frascos ámbar debidamente etiquetados. Para evitar la contracción o distorsión de las membranas celulares de los microorganismos, se adicionó a la muestra un agente narcótico (soda y trazas de bórax). Una vez los organismos fueron adormecidos y pasados 30 minutos de haber adicionado los agentes narcotizantes, se añadió la solución fijadora (Etanol 70 %). Finalmente, las muestras fueron rotuladas y trasladadas al laboratorio para su posterior análisis.","Macrófitas acuáticas: En el cuerpo de agua de interés se extendió un transecto de 10 metros de longitud paralelo a la orilla, que se extendió 1 m hacia el interior del cuerpo de agua y 1 m hacia el exterior (interfase tierra-agua). Tomando como referencia la línea del transecto, se registró el porcentaje de cobertura para cada morfoespecie presente en un cuadrante de 1 m2, actividad que fue replicada tres (3) veces en la fase acuática y tres (3) veces en la interfase agua – tierra, se identificaron y registraron las macrófitas presentes. La información obtenida se registró en el formato de campo (características de la planta, hábitat, tipo de crecimiento, entre otros). De las especies observadas en campo y de cada cuadrante se tomó registro fotográfico.","Ictiofauna: Para el muestreo de la ictiofauna, la toma de muestra se desarrolló empleando diferentes artes de pesca dependiendo de las condiciones del cuerpo de agua. Se uso una red de arrastre y una atarraya realizando varios arrastres y lances en el cuerpo de agua hasta completar un esfuerzo de muestreo de 60 minutos. La longitud del transecto (100 m) propuesta para la metodología de fauna íctica anteriormente mencionada puede variar según las condiciones longitudinales de los cuerpos de agua (acceso, homogeneidad de los sustratos y tamaño del cuerpo de agua)."]},"countryCoverage":[],"collections":[],"dataDescriptions":[],"dataLanguage":"spa","purpose":"Caracterizar de la calidad de las aguas superficiales.
","pubDate":"2025-04-09T00:00:00.000+00:00","maintenanceUpdateFrequency":"UNKOWN","maintenanceDescription":"","license":"http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/legalcode","dwca":{"coreType":"http://rs.tdwg.org/dwc/terms/Event","extensions":["http://rs.tdwg.org/dwc/terms/Occurrence","http://rs.iobis.org/obis/terms/ExtendedMeasurementOrFact"],"modified":"2026-10-12T04:16:24.869+00:00"},"approximateCounts":{"occurrenceCount":79}}