Con la finalidad de llevar a cabo la evaluación de la dinámica ecosistémica en el departamento del Quindío, se realizo la caracterización y monitoreo de la flora (vascular y no vascular) y fauna (aves, mamíferos, herpetos, peces, macroinvertebrados acuáticos y mariposas) en las zonas de vida de bosque premontano, bosque montano, bosque altoandino y páramo. \n\n
Esta evaluación se llevó a cabo entre las vigencias 2021, 2022 y 2023, a través del convenio interadministrativo 007 de 2021, suscrito y ejecutado entre la Corporación Autónoma Regional del Quindío y la Universidad del Quindío.
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Occurrence dataset https://doi.org/10.15472/xhsxhs accessed via GBIF.org on 2026-10-14.","identifier":"https://doi.org/10.15472/xhsxhs","citationProvidedBySource":false},"contactsCitation":[{"key":6152875,"abbreviatedName":"Valencia Zapata D C","firstName":"Diana Carolina","lastName":"Valencia Zapata","roles":["ORIGINATOR"],"userId":[]},{"key":6152876,"abbreviatedName":"Universidad del Quindío","lastName":"Universidad del Quindío","roles":["METADATA_AUTHOR"],"userId":[]}],"lockedForAutoUpdate":false,"createdBy":"85e6ceac-5381-4378-917c-dc3b8032affa","modifiedBy":"crawler.gbif.org","created":"2025-06-24T20:26:23.996+00:00","modified":"2025-06-24T20:27:25.074+00:00","contacts":[{"key":6152875,"type":"ORIGINATOR","primary":true,"userId":[],"firstName":"Diana Carolina","lastName":"Valencia Zapata","position":["Profesional universitario grado 10"],"email":["dcvalenciazapata@crq.gov.co"],"phone":[],"homepage":["http://www.crq.gov.co"],"organization":"Corporación Autónoma Regional del Quindío","address":["Calle 19 Norte No.19-55 B. 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A continuación, se referencia las estaciones de monitoreo:\n1. Zona de vida Bosque altoandino: Navarco alto (Salento), La Sonadora (Calarcá)\n2. Zona de vida Páramo: Complejo de páramos Chili-Barragán (Pijao), Paramillo del Quindío (Salento)\n3. Bosque montano: La Rivera-Bremen-La Popa (Filandia-Circasia), La Esperanza (Buenavista)\n4. Bosque premontano: El Ocaso-Veraguas (Quimbaya-Montenegro), La Esperanza (La Tebaida)","designDescription":"FLORA: El desarrollo de las actividades de monitoreo se realizarán parcelas permanentes de 50 x 2, 20 en total para cada zona de vida. Se establecerá como unidad de monitoreo los bosques o relictos más conservados. Para el registro de individuos con diámetro normal superior a 5 cm, lo que incluye vegetación de arbustos y árboles. Las unidades de muestreo permitirán realizar un seguimiento de la conectividad de los ecosistemas y los potenciales efectos acumulativos de la intervención. Las parcelas de monitoreo corresponden a las coberturas vegetales.\n \nSe marcarán y medirán todos los árboles tomando las variables diámetro y altura; todos los árboles con diámetros normales (medido a 130 cm de la superficie del suelo), mayores e iguales a 5 cm cuyo punto de medición quedará delimitado por una cuerda de polipropileno y una franja de color amarillo y marcados con una placa de aluminio (anclada con un clavo inoxidable al árbol), donde se repujará el respectivo código para el individuo, el cual estará constituido por dos números dispuestos en forma fraccionaria, el primero corresponde al número del transecto y el segundo al respectivo número consecutivo del árbol, es decir, cada parcela tendrá un número de individuos codificados para éste como una unidad, ejemplo: (2/75) corresponde al árbol No 75 parcela 2.\n \nHERPETOS: Se realizará búsqueda directa e indirecta de individuos utilizando las metodologías propuestas por Heyer et al. (2001).\n \nMétodos directos: Se utilizarán transectos de 50x4m en cada punto de muestreo (2-3 transectos en función del tamaño del fragmento vegetal), separados entre sí por una distancia no menor a 100 m en cada elemento seleccionado (Jaeger 1994, Jaeger & Inger 1994). Y recorridos libres en horarios diurnos (14:00-17:00) a través del muestreo de encuentros por inspección visual inspeccionando bordes de camino, cuevas, troncos caídos y ambiente higroscópicos (Heyer et al. 2001).\n \nMétodos indirectos: Se complementará la búsqueda por VES con recorridos de 500m registrando los machos vocalmente activos a través de grabaciones con micrófono unidireccional, especialmente durante época reproductiva, con estaciones cada 100m (modificado de Heyer et al. 1994, Wells 1977, Zimmerman 1994).\n \nAVES: se implementarán tres métodos de campo los cuales son los siguientes.\n \nRedes de niebla: Se seguirá el protocolo de Bibby et al. (1992), Ralph et al. (1996) y Villarreal et al. (2004). Se instalarán cuatro redes de niebla (12x2.5m) en cada hábitat posible (incluido el dosel), Estas se abrirán desde las 06:00 hasta las 11:00 h durante dos días consecutivos para un total de 40 h/red/hábitat, con participación de al menos 2 personas y 4 estaciones de observación directa. La identificación de especies se realizará con base en las guías de Hilty & Brown (1986, 2001), ABO (2000), Rodríguez-Mahecha & Hernández-Camacho (2002) y Restall et al. (2006) y, para la identificación de aves migratorias se utilizará la guía de Fitzpatrick (2002). El orden taxonómico y la nomenclatura seguirán a Remsen et al. (2010) para aves de Sudamérica.\n \nPara todos los individuos capturados se les consignara sus datos correspondientes en fichas de campo la localidad, coordenadas, altitud, fecha, número de captura, determinación taxonómica, coloración de las partes blandas (iris, patas, pico, partes de piel desnuda), sexo, edad, estado reproductivo, cantidad de grasa en la fúrcula y flancos y estado del plumaje (adulto, juvenil). También se registrarán rasgos biométricos como: peso, culmen, rictus, altura del pico, longitud de la cola, del tarso y del ala (Villareal et al. 2004). Cada especie capturada será fotografiada para complementar la información de captura.\n \nPuntos de conteo: Se empleará el método de conteo por puntos en el área de redes y sus alrededores, según Bibby et al. (1992) y Ralph et al. (1996). Dado la dinámica y movilidad de las especies aves encontrado en los monitoreos realizados a partir del año 2012, se establecerán cuatro (4) puntos de conteo con 4 sitios de muestreo de redes en sitios estratégicos y ecológicamente transitados por la población de aves separados entre sí para cubrir el área de influencia del monitoreo, Se tendrá un promedio de muestreo por hábitat. La duración en cada punto de conteo por observación directa será de diez minutos y se registrarán las aves vistas y escuchadas en un radio ≤ 50m.\n \nBioacústica: Para registrar los cantos se realizarán recorridos de 4 Km. diarios a una velocidad promedio de 0.8 Km/h, durante dos días en cada tipo de hábitat, de acuerdo con las recomendaciones del IAvH (Aldana et al. 2009). Las grabaciones serán digitalizadas, catalogadas, identificadas y archivadas en formatos digitales.\n \nMARIPOSAS: se utilizarán dos métodos de campo para el estudio de este grupo, el cual consiste en observación visual directa y captura con red entomológica. Se establecerán cuatro transectos de 100x10 m, realizando recorridos de 30 minutos entre las 7:00 y las 15:00 h (usualmente, la actividad de las mariposas se reduce a menos de la mitad pasado el mediodía), más un muestreo adicional entre las 17:00 y las 18:30 h para la captura de especies de hábitos crepusculares (esfuerzo total de captura 9.5 h/día). Cada unidad de muestreo corresponde al recorrido de 30 minutos, repetir el mismo recorrido constituirá una réplica del muestreo.\n \nTrampas van Someren – Rydon . Se establecerán dos transectos lineales de 250 m por cada sitio de muestreo, donde se ubicarán seis trampas, construidas de acuerdo con las especificaciones de DeVries (1987, 1988), suspendidas a tres metros de altura y distanciadas 50m entre sí, deberán permanecer durante 48 h en el sitio de muestreo y se revisarán cada 3 h, entre las 9:00 y las 18:00 h. Se utilizarán al menos dos tipos de atrayente (eg. carne o fruta y pescado en descomposición).\n \nLos ejemplares colectados serán sacrificados con inyección letal de etanol 70% en tórax y serán almacenados en sobres triangulares de papel milano blanco, donde se registrarán diferentes datos de captura. Para su transporte se utilizará un recipiente hermético que contiene naftalina y silicagel para evitar la proliferación de hongos. Para el ablandamiento alar, los especímenes sé rehidratarán con inyección de agua a 40°C y posteriormente serán montados en extensores alares.\n \nMAMÍFEROS: El monitoreo de la mastofauna se realizará abarcando los 15 puntos de muestreo sobre áreas preestablecidas por el proyecto. La diversidad de especies de mamíferos será documentada empleando técnicas de captura discriminantes por tamaño y hábito; todos los avistamientos serán geoposicionados. Adicionalmente, se identificarán los ecosistemas a los que se encuentren asociados (refugios, zonas de alimentación y reproducción, entre otros). Métodos a ser implementados en la documentación de mamíferos presentes en el área de interés, discriminados por tamaño y hábito de los grupos serán los siguientes:\n•\tMamíferos medianos y arborícolas (recorridos transectos)\n•\tMamíferos grandes y medianos terrestres (Transectos, cámaras trampa y trampas Tomahawk)\n•\tMamíferos pequeños arborícolas y terrestres (transectos y trampas Sherman)\n•\tMamíferos voladores (Redes de niebla)\n \nMétodos de observación indirecta (Trampas de huella): Se prepararán superficies circulares de aproximadamente 1m de diámetro, donde será retirado el material vegetal y/o rocas con el objetivo de dejar suelto el terreno y la superficie lo más plana posible. En cada trampa se dejará un atrayente en el centro que será renovado periódicamente. La ubicación, distancia y distribución de las trampas dependerá de las características del terreno (pendiente pronunciada y/o con vegetación densa).\n \nLas trampas de huella serán ubicadas frente a las cámaras trampa, de modo que las medidas de las huellas, permitan individualizar las capturas para grupos de organismos que no tienen patrones de manchas evidentes. Se medirá el largo y ancho de las huellas registradas y se considerará el largo y ancho del cojinete y los dedos. Así mismo, se realizará registro fotográfico y se obtendrá la impresión de la huella en yeso. Las trampas se revisarán diariamente y se tendrá en cuenta la operatividad de las mismas cada noche. Las huellas encontradas se identificarán con la colaboración del guía de la región, mediante bibliografía (Aranda 2012).\n \nBúsqueda de rastros: Se registrará toda evidencia de alimentación o de actividad que pudiera identificarse con certeza como perteneciente a un mamífero con la colaboración de un guía de la región y con apoyo bibliográfico. Este método se hará paralelamente al método de observación directa.\n \nMACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS: EL material biológico se colectará a través de una red Surber (0,09 m2) en cuatro sustratos (roca, grava, arena y hojarasca), siguiendo la metodología propuesta por Wantzen y Rueda (2009). El material se depositará en frascos plásticos debidamente etiquetados y se fijarán con Formol (10%) para su limpieza y determinación en los Laboratorios de la Universidad del Quindío.\n\nLa limpieza y separación de los organismos se realizará usando estereomicroscopio Motic SMZ-168 (10X). La determinación del material biológico se realizará hasta el mínimo nivel taxonómico (caso de los macroinvertebrados hasta genero) posible empleando las claves taxonómicas de Machado (1989), Posada y Roldán (2003), Merrit et al. (2008), Domínguez y Fernández (2009).\n \nPECES: El muestreo será llevado a cabo a través de electropesca, la cual es un tipo de pesca ventajoso debido a que no es selectivo y es más eficiente en las capturas por unidad de esfuerzo (Growns et al., 1996). Este consiste en una corriente que fluye entre dos electrodos opuestos en el agua y que al tener contacto con los peces les produce un estado de electrotaxis (natación de forma obligada), electrotétano y electronarcosis (Lobón-Cerviá, 1996), lo que facilita su captura. Adicionalmente, este método será apoyado con redes de arrastre empleadas principalmente en zonas profundas o de remanso. La identificación taxonómica de los ejemplares se realizará con base en las claves y descripciones disponibles en Eigenmann (1918,), Dahl (1971), Harold & Vari (1994), Ambruster (2004), Briñez-Vásquez (2004), García-Melo (2005), Maldonado -Ocampo et al. (2005), Covain & Fisch-Muller (2007), Bertaco (2008), Román-Valencia et al. (2008) y Provenzano (2011).","relatedProjects":[],"abstract":"Se realizo la evaluación ecosistémica de cuatro zonas de vida (bosque premontano, bosque montano, bosque altoandino y páramo) de la flora (vascular y no vascular) y la fauna (aves, mamíferos, herpetos, peces, mariposas y macroinvertebrados acuáticos)."},"samplingDescription":{"studyExtent":"El proyecto se llevó a cabo en cuatro zonas de vida del departamento del Quindío (Bosque premontano, Bosque montano, Bosque altoandino y Páramo), las cuales se extienden en un gradiente altitudinal entre 900 a 3600 metros. Cabe mencionar que para cada zona de vida se escogieron dos estaciones de monitoreo con la finalidad que se realice un muestreo significativo.\n\nZona de vida Bosque premontano: Para esta zona de vida, se definieron la hacienda el Ocaso y la finca la Lolita. A continuación, se describe los sitios muestreados: \n\nLa Hacienda El Ocaso: está ubicada en la vereda el Laurel, municipio de Quimbaya, departamento del Quindío, a 4°34’08” N y -75°51’03” O a 970 m.s.n.m. Dentro de la hacienda se encuentra la reserva natural “La Montaña del Ocaso”, con una extensión aproximada actual de 148,84 ha. \n\nFinca la lolita: se compone de dos predios colindantes los cuales hacen parte de la sociedad civil y que en conjunto tiene una extensión de 9.44 ha, de las cuales 4 ha que conforma el 42.37 %. Esta ubicada en la vereda El Alambrado del municipio de La Tebaida, departamento del Quindío, a los 4°25’53.6” N y -75°50`29.93” O, presenta altitudes que van desde los 1085 a los 1190 m.s.n.m.\n\nZona de vida Bosque montano: los sitios de muestreo fueron el predio “La Esperanza” y La reserva natural la Rivera.\n\nEl predio “La Esperanza”: se encuentra localizado en el piedemonte de la cordillera central, hacia el sur occidente del departamento del Quindío, en el municipio de Buenavista veredas La Mina y La Granja, a los 4°21’24.6” de latitud norte y a los -75°43’33” de longitud oeste. Cuenta con una extensión de 125 ha, entre los 1750 y los 2150 m.s.n.m.\n \nLa reserva natural la Rivera: se localiza al norte del departamento del Quindío, en la vereda Cruces del municipio de Filandia, a los 4°41’40” de latitud norte y a los -75°34’30” de longitud oeste, tiene un área de 192 ha divididas en tres predios donde se encuentran altitudes que van desde los 2100 a los 2310 m.s.n.m.\n\nZona de vida Bosque Altoandino: Se caracterizó la Reserva natural Navarco Alto y os predios los sitios de muestreo fueron el predio “La Esperanza” y La reserva natural La Sonadora.\n\n\nLa Reserva Natural Navarco Alto: se encuentra ubicada al oriente del municipio de Salento a 2972 ms.n.m, latitud 4°29.016’, longitud 75°33.208’, y una extensión de 584.40 Ha.\n\nLa reserva natural La Sonadora: ubicada en el flanco Occidental de la Cordillera Central de Colombia, entre los municipios de Calarcá y Córdoba, cuyas coordenadas son 04°26´072” N y 75°37´09” O, esta reserva pertenece al Comité de Cafeteros del Quindío y cubre una extensión de 2000 ha.\n\nZona de vida Páramo: En la zona de vida de páramo, los sitios muestreados fueron páramo ubicado en Camino Nacional y el páramo El Campanario.\n\nCamino Nacional en el Alto del Quindío: esta zona se encuentra ubicada en la Cordillera Central en el municipio de Salento, a los 4°33'07.7\" N, 75°31'04.7 W, con una altitud máxima de 3300 m.s.n.m.\n\nPáramo El Campanario: localizado el municipio de Calarcá, a los 4°27'22.6\"N, 75°34'37.8\" W con una altitud máxima de 3600 m.s.n.m.","sampling":"El muestreo biológico se llevó a cabo durante dos años consecutivos mediante visitas periódicas a cuatro zonas de vida representativas de gradientes altitudinales (desde 900 m hasta 4.000 m), seleccionadas según sus condiciones de conservación (sitios prístinos) y de transición (matrices agrícolas, ganaderas y de infraestructura). En cada zona se establecieron parcelas permanentes donde se registraron sistemáticamente las especies vegetales (herbáceas, arbustos y árboles) y animales (invertebrados y vertebrados) utilizando métodos estandarizados. El diseño estratificado permitió comparar la riqueza y abundancia en función de la altitud, el estado de conservación y el tipo de intervención humana, garantizando réplicas espaciales y temporales suficientes para identificar patrones de distribución y respuesta ecológica a lo largo del gradiente.\n\nSiguiendo los lineamientos de Magurran (2004) y Krebs (1999), para la vegetación se establecieron parcelas permanentes de 20 × 20 m en las cuales se registraron datos diamétricos (DAP) y de abundancia de cada individuo leñoso; estos datos se importaron a R (versión 4.2.1) y se procesaron en RStudio utilizando el paquete vegan (Oksanen et al., 2019) para calcular índices de diversidad de Shannon–Wiener, Simpson y equidad de Pielou. Para los grupos faunísticos, conforme a Bibby et al. (2000) en avifauna se emplearon puntos de conteo fijos y recorridos transectales libres; en mamíferos medianos y grandes se instalaron cámaras trampa siguiendo el protocolo de O’Connell et al. (2011); la captura de aves y murciélagos se realizó con redes de niebla según Stein (1983); y para mariposas nocturnas y diurnas se dispusieron trampas Bansomer y Sebos de cebo (DeVries, 1987). Todos los registros de riqueza y abundancia faunística fueron analizados en RStudio mediante vegan para diversidad alfa y iNEXT (Hsieh et al., 2016) para estimaciones de riqueza y curvas de rarefacción, garantizando comparaciones estadísticamente robustas entre zonas y grupos","qualityControl":"El control y la evaluación de los datos obtenidos durante la fase de campo, en el marco de la ejecución del convenio interadministrativo 007 de 2021 llevado a cabo entre la Corporación Autónoma Regional del Quindío (CRQ) y la Universidad del Quindío (UQ) se realizo a través de la supervisión y revisión de informes de actividades preliminares y finales, una vez corroborado la información por la supervisión se autorizo pago de las actividades ejecutadas. La información revisada consiste en: 1. Base de datos con información primaria (flora vascular y no vascular, aves, mamíferos, anfibios, reptiles, macroinvertebrados acuáticos, peces y mariposas), 2. Informes técnicos por zonas de vida, 3. Registro fotográfico, 4. Cartografía, 5. Documento síntesis general por zonas de vida.","methodSteps":["FLORA: El desarrollo de las actividades de monitoreo se realizarán parcelas permanentes de 50 x 2, 20 en total para cada zona de vida. Se establecerá como unidad de monitoreo los bosques o relictos más conservados. Para el registro de individuos con diámetro normal superior a 5 cm, lo que incluye vegetación de arbustos y árboles. Las unidades de muestreo permitirán realizar un seguimiento de la conectividad de los ecosistemas y los potenciales efectos acumulativos de la intervención. Las parcelas de monitoreo corresponden a las coberturas vegetales.\n \nSe marcarán y medirán todos los árboles tomando las variables diámetro y altura; todos los árboles con diámetros normales (medido a 130 cm de la superficie del suelo), mayores e iguales a 5 cm cuyo punto de medición quedará delimitado por una cuerda de polipropileno y una franja de color amarillo y marcados con una placa de aluminio (anclada con un clavo inoxidable al árbol), donde se repujará el respectivo código para el individuo, el cual estará constituido por dos números dispuestos en forma fraccionaria, el primero corresponde al número del transecto y el segundo al respectivo número consecutivo del árbol, es decir, cada parcela tendrá un número de individuos codificados para éste como una unidad, ejemplo: (2/75) corresponde al árbol No 75 parcela 2.","HERPETOS: Se realizará búsqueda directa e indirecta de individuos utilizando las metodologías propuestas por Heyer et al. (2001).\n \nMétodos directos: Se utilizarán transectos de 50x4m en cada punto de muestreo (2-3 transectos en función del tamaño del fragmento vegetal), separados entre sí por una distancia no menor a 100 m en cada elemento seleccionado (Jaeger 1994, Jaeger & Inger 1994). Y recorridos libres en horarios diurnos (14:00-17:00) a través del muestreo de encuentros por inspección visual inspeccionando bordes de camino, cuevas, troncos caídos y ambiente higroscópicos (Heyer et al. 2001).\n \nMétodos indirectos: Se complementará la búsqueda por VES con recorridos de 500m registrando los machos vocalmente activos a través de grabaciones con micrófono unidireccional, especialmente durante época reproductiva, con estaciones cada 100m (modificado de Heyer et al. 1994, Wells 1977, Zimmerman 1994).","AVES: se implementarán tres métodos de campo los cuales son los siguientes.\n \nRedes de niebla: Se seguirá el protocolo de Bibby et al. (1992), Ralph et al. (1996) y Villarreal et al. (2004). Se instalarán cuatro redes de niebla (12x2.5m) en cada hábitat posible (incluido el dosel), Estas se abrirán desde las 06:00 hasta las 11:00 h durante dos días consecutivos para un total de 40 h/red/hábitat, con participación de al menos 2 personas y 4 estaciones de observación directa. La identificación de especies se realizará con base en las guías de Hilty & Brown (1986, 2001), ABO (2000), Rodríguez-Mahecha & Hernández-Camacho (2002) y Restall et al. (2006) y, para la identificación de aves migratorias se utilizará la guía de Fitzpatrick (2002). El orden taxonómico y la nomenclatura seguirán a Remsen et al. (2010) para aves de Sudamérica.\n \nPara todos los individuos capturados se les consignara sus datos correspondientes en fichas de campo la localidad, coordenadas, altitud, fecha, número de captura, determinación taxonómica, coloración de las partes blandas (iris, patas, pico, partes de piel desnuda), sexo, edad, estado reproductivo, cantidad de grasa en la fúrcula y flancos y estado del plumaje (adulto, juvenil). También se registrarán rasgos biométricos como: peso, culmen, rictus, altura del pico, longitud de la cola, del tarso y del ala (Villareal et al. 2004). Cada especie capturada será fotografiada para complementar la información de captura.\n \nPuntos de conteo: Se empleará el método de conteo por puntos en el área de redes y sus alrededores, según Bibby et al. (1992) y Ralph et al. (1996). Dado la dinámica y movilidad de las especies aves encontrado en los monitoreos realizados a partir del año 2012, se establecerán cuatro (4) puntos de conteo con 4 sitios de muestreo de redes en sitios estratégicos y ecológicamente transitados por la población de aves separados entre sí para cubrir el área de influencia del monitoreo, Se tendrá un promedio de muestreo por hábitat. La duración en cada punto de conteo por observación directa será de diez minutos y se registrarán las aves vistas y escuchadas en un radio ≤ 50m.\n \nBioacústica: Para registrar los cantos se realizarán recorridos de 4 Km. diarios a una velocidad promedio de 0.8 Km/h, durante dos días en cada tipo de hábitat, de acuerdo con las recomendaciones del IAvH (Aldana et al. 2009). Las grabaciones serán digitalizadas, catalogadas, identificadas y archivadas en formatos digitales.","MARIPOSAS: se utilizarán dos métodos de campo para el estudio de este grupo, el cual consiste en observación visual directa y captura con red entomológica. Se establecerán cuatro transectos de 100x10 m, realizando recorridos de 30 minutos entre las 7:00 y las 15:00 h (usualmente, la actividad de las mariposas se reduce a menos de la mitad pasado el mediodía), más un muestreo adicional entre las 17:00 y las 18:30 h para la captura de especies de hábitos crepusculares (esfuerzo total de captura 9.5 h/día). Cada unidad de muestreo corresponde al recorrido de 30 minutos, repetir el mismo recorrido constituirá una réplica del muestreo.\n \nTrampas van Someren – Rydon . Se establecerán dos transectos lineales de 250 m por cada sitio de muestreo, donde se ubicarán seis trampas, construidas de acuerdo con las especificaciones de DeVries (1987, 1988), suspendidas a tres metros de altura y distanciadas 50m entre sí, deberán permanecer durante 48 h en el sitio de muestreo y se revisarán cada 3 h, entre las 9:00 y las 18:00 h. Se utilizarán al menos dos tipos de atrayente (eg. carne o fruta y pescado en descomposición).\n \nLos ejemplares colectados serán sacrificados con inyección letal de etanol 70% en tórax y serán almacenados en sobres triangulares de papel milano blanco, donde se registrarán diferentes datos de captura. Para su transporte se utilizará un recipiente hermético que contiene naftalina y silicagel para evitar la proliferación de hongos. Para el ablandamiento alar, los especímenes sé rehidratarán con inyección de agua a 40°C y posteriormente serán montados en extensores alares.","MAMÍFEROS: El monitoreo de la mastofauna se realizará abarcando los 15 puntos de muestreo sobre áreas preestablecidas por el proyecto. La diversidad de especies de mamíferos será documentada empleando técnicas de captura discriminantes por tamaño y hábito; todos los avistamientos serán geoposicionados. Adicionalmente, se identificarán los ecosistemas a los que se encuentren asociados (refugios, zonas de alimentación y reproducción, entre otros). Métodos a ser implementados en la documentación de mamíferos presentes en el área de interés, discriminados por tamaño y hábito de los grupos serán los siguientes:\n•\tMamíferos medianos y arborícolas (recorridos transectos)\n•\tMamíferos grandes y medianos terrestres (Transectos, cámaras trampa y trampas Tomahawk)\n•\tMamíferos pequeños arborícolas y terrestres (transectos y trampas Sherman)\n•\tMamíferos voladores (Redes de niebla)\n \nMétodos de observación indirecta (Trampas de huella): Se prepararán superficies circulares de aproximadamente 1m de diámetro, donde será retirado el material vegetal y/o rocas con el objetivo de dejar suelto el terreno y la superficie lo más plana posible. En cada trampa se dejará un atrayente en el centro que será renovado periódicamente. La ubicación, distancia y distribución de las trampas dependerá de las características del terreno (pendiente pronunciada y/o con vegetación densa).\n \nLas trampas de huella serán ubicadas frente a las cámaras trampa, de modo que las medidas de las huellas, permitan individualizar las capturas para grupos de organismos que no tienen patrones de manchas evidentes. Se medirá el largo y ancho de las huellas registradas y se considerará el largo y ancho del cojinete y los dedos. Así mismo, se realizará registro fotográfico y se obtendrá la impresión de la huella en yeso. Las trampas se revisarán diariamente y se tendrá en cuenta la operatividad de las mismas cada noche. Las huellas encontradas se identificarán con la colaboración del guía de la región, mediante bibliografía (Aranda 2012).\n \nBúsqueda de rastros: Se registrará toda evidencia de alimentación o de actividad que pudiera identificarse con certeza como perteneciente a un mamífero con la colaboración de un guía de la región y con apoyo bibliográfico. Este método se hará paralelamente al método de observación directa.","MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS: EL material biológico se colectará a través de una red Surber (0,09 m2) en cuatro sustratos (roca, grava, arena y hojarasca), siguiendo la metodología propuesta por Wantzen y Rueda (2009). El material se depositará en frascos plásticos debidamente etiquetados y se fijarán con Formol (10%) para su limpieza y determinación en los Laboratorios de la Universidad del Quindío.\n\nLa limpieza y separación de los organismos se realizará usando estereomicroscopio Motic SMZ-168 (10X). La determinación del material biológico se realizará hasta el mínimo nivel taxonómico (caso de los macroinvertebrados hasta genero) posible empleando las claves taxonómicas de Machado (1989), Posada y Roldán (2003), Merrit et al. (2008), Domínguez y Fernández (2009).","PECES: El muestreo será llevado a cabo a través de electropesca, la cual es un tipo de pesca ventajoso debido a que no es selectivo y es más eficiente en las capturas por unidad de esfuerzo (Growns et al., 1996). Este consiste en una corriente que fluye entre dos electrodos opuestos en el agua y que al tener contacto con los peces les produce un estado de electrotaxis (natación de forma obligada), electrotétano y electronarcosis (Lobón-Cerviá, 1996), lo que facilita su captura. Adicionalmente, este método será apoyado con redes de arrastre empleadas principalmente en zonas profundas o de remanso. La identificación taxonómica de los ejemplares se realizará con base en las claves y descripciones disponibles en Eigenmann (1918,), Dahl (1971), Harold & Vari (1994), Ambruster (2004), Briñez-Vásquez (2004), García-Melo (2005), Maldonado -Ocampo et al. (2005), Covain & Fisch-Muller (2007), Bertaco (2008), Román-Valencia et al. (2008) y Provenzano (2011)."]},"countryCoverage":[],"collections":[],"dataDescriptions":[],"dataLanguage":"spa","pubDate":"2025-06-24T00:00:00.000+00:00","maintenanceUpdateFrequency":"AS_NEEDED","maintenanceDescription":"","license":"http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/legalcode","dwca":{"coreType":"http://rs.tdwg.org/dwc/terms/Occurrence","extensions":[],"modified":"2026-10-12T03:55:18.103+00:00"},"approximateCounts":{"occurrenceCount":3323}}