El proyecto “Estudio de Impacto Ambiental del UPM E STR 13 – 2015 El Paso – La Loma – La Jagua 110 kV”, se desarrolló entre 25 y el 31 de julio de 2020, se realizó monitoreo hidrobiológico de Fitoplancton, Zooplancton, Perifiton, Macrófitas, Macroinvertebrados bentónico e Ictiofauna en 19 puntos de monitoreo, ubicados en los municipios de La Jagua de Ibirico, Chiriguaná, El Paso, departamento del Cesar.
El recurso cuenta con 684 registros biológicos de los cuales el 91 % están determinados hasta especie o género.
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Los organismos bentónicos fueron reportados a nivel de familia, subfamilia y género; los organismos de perifito y fitoplancton fueron identificado hasta el nivel taxonómico de género; los organismos de zooplancton se identificaron a hasta los niveles de filo, familia, subclase y género, las macrofitas se identificaron a nivel de género. Los peces capturados fueron identificados hasta el nivel taxonómico de especie. El recurso cuenta con 684 registros biológicos de los cuales el 91 % están determinados hasta especie o género.","coverages":[{"scientificName":"Plantae","rank":{"verbatim":"kingdom","interpreted":"KINGDOM"}},{"scientificName":"Chromista","rank":{"verbatim":"kingdom","interpreted":"KINGDOM"}},{"scientificName":"Bacillati","rank":{"verbatim":"kingdom","interpreted":"KINGDOM"}},{"scientificName":"Protozoa","rank":{"verbatim":"kingdom","interpreted":"KINGDOM"}},{"scientificName":"Animalia","rank":{"verbatim":"kingdom","interpreted":"KINGDOM"}}]}],"geographicCoverages":[{"description":"Departamento del Cesar, en los municipios de La Jagua de Ibirico, Chiriguaná, El Paso, punto: Afluente Caño El Borracho , Afluente Caño Pajuil , Arroyo Corral Grande , Caño , Caño Pachito , Caño Pajuil , Caño Paraluz , Cuerpo Lentico Drummond 1 , Cuerpo Lentico Drummond 2 , Cuerpo Lentico Drummond 3 , P3 B , P4 A , Punto 3a , Punto P4b2 , Rio Canoas , Rio Cesar , Rio Sororia","boundingBox":{"minLatitude":9.576,"maxLatitude":9.733,"minLongitude":-73.719,"maxLongitude":-73.324,"globalCoverage":false}}],"temporalCoverages":[{"@type":"range","start":"2020-07-25T00:00:00.000+00:00","end":"2020-07-31T00:00:00.000+00:00"}],"keywordCollections":[{"thesaurus":"GBIF Dataset Subtype Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_subtype.xml","keywords":["Observation"]},{"thesaurus":"n/a","keywords":["Zooplancton","El Paso","macroinvertebrados bentónicos","hidrobiológicos.","Icitiofauna","Fitoplancton","Chiriguaná","Cesar","La Jagua de Ibirico","Macrofitas","Perifiton"]},{"thesaurus":"GBIF Dataset Type Vocabulary: http://rs.gbif.org/vocabulary/gbif/dataset_type_2015-07-10.xml","keywords":["Occurrence"]}],"project":{"title":"Estudio de Impacto Ambiental del UPM E STR 13 – 2015 El Paso – La Loma – La Jagua 110 kV.","identifier":"laboratorio de hidrobiologica, MCS Consultoria y Monitoreo Ambiental","contacts":[{"type":"METADATA_AUTHOR","primary":false,"userId":[],"firstName":"Francisco","lastName":"Perea","position":[],"email":[],"phone":[],"homepage":[],"address":[]}],"funding":"MCS CONSULTORIA Y MONITOREO AMBIENAL S.A.S","awards":[],"relatedProjects":[]},"samplingDescription":{"studyExtent":"El proyecto desarrolla en los municipios La Jagua de Ibirico, Chiriguaná, El Paso, departamento del Cesar, para Estudio de Impacto Ambiental del UPM E STR 13 – 2015 El Paso – La Loma – La Jagua 110 kV, en una (1) campaña comprendida entre: 25 y 31 de julio de 2020.","sampling":"Para toma de muestras de macroinvertebardos bentónicos, se utilizó una red Surber con diámetro de ojo de malla de 530 μm, de 30cm X 30cm, el cual es depositado sobre el sustrato con la abertura en dirección contraria a la corriente, para así barrer el fondo desplazando los sedimentos dentro del cono, este proceso se llevó a cabo en cada uno de los puntos evaluados. Las muestras fueron depositas en bolsa plásticas, identificadas y rotuladas con la información básica del proyecto y el punto de monitoreo. Las muestras de fitoplancton fueron tomadas utilizando y filtrado 10 baldes de 10 litros filtrados con red de diámetro de ojo de 23 µm, las muestras fueron depositas y preservadas con luego en un frasco ámbar. Por su parte las muestras de zooplancton, fueron tomadas utilizando 10 baldes de 10 litros filtrados con red de diámetro de ojo de 55 µm, las muestras fueron narcotizadas con bórax y fijadas con solución traseau. Para tomar las muestras de perifiton, se realizaron raspado en los sustratos naturales presentes en los puntos monitoreados (troncos, piedras y hojas), en un área conocida (cuadrante de perifíton de 78.2 cm2), s muestras fueron depositas y preservadas con luego en un frasco ámbar. Para las macrófitas se realizó un transecto, para luego registrar el porcentaje de cobertura para cada morfo-especie encontrada, en un cuadrante de 1m x 1m, actividad que fue replicada seis (6) veces, de las cuales tres (3) se realizaron en la interfase agua – tierra y tres (3) en la fase acuática, cada macrófita fue fotografiada con todas las estructuras posibles (raíces, hojas, entre otros) que faciliten su identificación. Finalmente la ictiofauna (peces), se utilizó una red de arrastre de 60 x 1,5 m, ojo de maya de 625 μm, realizando Máximo 4 arrastres por transecto de 100m / 1 transecto por estación de 100m / 10 estaciones por cada 1km del cuerpo de agua ese realizaron, también se utilizó una atarraya con ojo de malla de 1 cm, altura de 1,8 m, realizando Máximo 60 lances por transecto de por estación de 2500 me. Finalmente, las muestras preservadas fueron envías al laboratorio para su respectivo análisis.","methodSteps":["Las metodologías utilizadas para la obtención de los datos y archivos, estuvieron basada en las directrices del standard Methods for Examination of Water and wastewaters, 2017, Edición 23rd. El recuento e identificación de los organismos de fitoplancton, se realizó siguiendo el protocolo 10200F de APHA-AWWA-WPCF (2017). Al efecto, el frasco que contenía la muestra concentrada en campo se agitaba para homogenizar la muestra, y del centro de este se tomaba una alícuota de 1 ml, que se depositaba en una placa Sedgwick-Rafter estándar (50 mm x 20 mm x 1 mm). A continuación, con ayuda de un microscopio compuesto con aumentos entre 40X y 200X, se realizó el recuento e identificación de los organismos; revisando un número determinado de transectos horizontales (filas). \nPara zooplancton El recuento e identificación de los organismos se realizó siguiendo el protocolo de APHA-AWWA-WPCF (2017). Al efecto, el frasco que contenía la muestra concentrada en campo se agitaba para homogenizar la muestra, y del centro de este se tomaba una alícuota de 1 ml, que se depositaba en una celda de conteo de plástico acrílico transparente de 1 mL, equipada con un cubreobjetos de vidrio. Para el caso de los microcrustáceos maduros más grandes, se utilizó una cámara de conteo que contenía de 5 a 10 mL. A continuación, con ayuda de un microscopio compuesto con aumentos entre 40X y 200X, se realizó el recuento e identificación de los organismos.","Para perifíton el recuento e identificación de los organismos se realizó siguiendo el protocolo 10300C de APHA-AWWA-WPCF (2017). Al efecto, el frasco que contenía la muestra concentrada en campo se agitaba para homogenizar la muestra, y del centro de este se tomaba una alícuota de 1 ml, que se depositaba en una placa Sedgwick-Rafter estándar (50 mm x 20 mm x 1 mm). A continuación, con ayuda de un microscopio compuesto con aumentos entre 40X y 100X, se realizaba el recuento e identificación de los organismos; revisando un número determinado de transectos horizontales (filas).","Para las metodologías de análisis y formulas de la comunidad de bentos, se basó en la tecina de SM 10500 B y C, las muestras colectadas se separaron sobre una serie de tamices con ojo de malla diferente, entre 330 μm y 1,18 mm; todo el material retenido en cada tamiz se revisó sobre bandejas esmaltadas blancas o cajas de Petri. Al efecto, se empleó un microscopio de luz (aumentos de 10X y 40X) y/o estereoscopio según la necesidad.","Para macrofitas se utiliza la técnica SM 10400 B, M., el protocolo de muestreo y análisis para Macrofitras, 2005 (Confederación hidrográfica del Ebro-URS). Para los peces se utilizó el protocolo de muestreo y análisis para Macrofitras, 2005 (Confederación hidrográfica del Ebro-URS). Para las macrófitas acuáticas, la identificación se basa en la observación de las estructuras vegetativas y florales de las plantas. Cuando es necesario se diseccionan las macrófitas con la ayuda de un estereoscopio (aumentos de 0,65X a 6X), pinzas y agujas finas; teniendo en cuenta la metodología propuesta en los textos de la APHA-AWWA-WPCF; APHA (American Public Health Association, AWWA (American Water Works Association) y WPCF (Water Pollution Control Federation), en el Standard Methods Edición 23rd (2017).","Para la identicación ictica (peces), se utilizó equipo óptico (micro y estereoscopio en aumentos entre 10 y 40X), según los requerimientos del espécimen, teniendo en cuenta caracteres merísticos y de pigmentación, según, la Metodología para el Establecimiento del Estado Ecológico Según Directiva Marco del Agua. 2005. Protocolo de Muestreo y Análisis para ictiofauna” (Confederación Hidrográfica del Ebro – URS)."]},"countryCoverage":[],"collections":[],"dataDescriptions":[],"dataLanguage":"spa","pubDate":"2026-09-28T00:00:00.000+00:00","maintenanceUpdateFrequency":"AS_NEEDED","maintenanceDescription":"","license":"http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/legalcode","dwca":{"coreType":"http://rs.tdwg.org/dwc/terms/Occurrence","extensions":["http://data.ggbn.org/schemas/ggbn/terms/Permit"],"modified":"2026-09-28T17:29:33.000+00:00"},"approximateCounts":{"occurrenceCount":684}}