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Artrópodos y microorganismos asociados al cultivo de mango en el departamento del Magdalena, Cundinamarca y Tolima. Version 1.1. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria - AGROSAVIA. 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Se colectaron 101.361 artrópodos distribuidos en dos clases la Arachnida y la insecta, 15 órdenes y 45 familias, y se obtuvieron 164 aislamientos que corresponden a cinco clases Dothideomycetes, Sordariomycetes, Alphaproteobacteria, Bacilli y Gammaproteobacteria, 8 ordenes, 9 familias y 10 géneros.","designDescription":"El proyecto Desarrollo de estrategias de manejo integrado del cultivo de mango para incrementar la competitividad del sistema productivo en el departamento del Magdalena se seleccionaron lotes de mango de fincas de productores en los municipios de Ciénaga, Zona Bananera y Santa Marta. La colecta de insectos plaga en hoja y rama se hizo de forma directa. Por otro lado, en las inflorescencias se utilizó la técnica de golpeteo sobre una hoja blanca, para realizar la colecta de trips, adicional a esto, se implementaron métodos de muestreos indirectos para la captura de pupas de trips que caen al suelo, esto se realizó mediante la instalación horizontal de una trampa de caída adhesiva plástica de color azul, con dimensiones (20 x 25 cm), que se ubicó debajo de una inflorescencia. Para la captura de adultos que emergen del suelo, se usó un recipiente de plástico hondo de color oscuro, que no permite la entrada de luz, además, la parte superior tiene aproximadamente la misma área de las trampas usadas para la captura de pupas y en la parte inferior un orificio circular de 10 cm de diámetro. La parte superior de este recipiente se colocó en el suelo, debajo de una inflorescencia y en el mismo árbol donde estaba la trampa de caída, el agujero fue cubierto con una cinta transparente que contenía pegante, con el fin de cubrir la salida, pero que permitiera la entrada de luz, de esta manera cuando un adulto de trips emergiera por allí, quedaría adherido en la cinta. Los especímenes fueron colectados en tubos Eppendorf y tubos Falcon con alcohol al 70% y en bolsas de papel. En cuanto a los frutos, se revisó el estado general, y si presentaban perforaciones por mosca de la fruta, se colectaban debidamente rotulados y se disponían en cajas de cría en laboratorio. La colecta de mosca de la fruta se realizó de forma directa en trampas McPhail con Cebofrut (proteína hidrolizada y borizada de maíz) y  recambio cada 8 días. La colecta de termitas se hizo de forma directa en el tronco y ramas, con una pinza punta plana y tubos Eppendorf con alcohol al 70%; se colectaron soldados y en el nido la reina. El muestreo de las hormigas se realizó al árbol en general, teniendo en cuenta la presencia y daño; la colecta se realizó igual que con las termitas. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Entomología del C. I. Caribia.\n\nCon relación al aislamiento de microorganismos, se tomaron muestras de órganos afectados (ramas, tallos, hojas, inflorescencias y frutos) y se llevó a cabo el proceso de desinfección del material vegetal que consistió en lavados con agua destilada estéril (1 minuto), hipoclorito al 2.5% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto), etanol al 70% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto) y para finalizar secado en toallas de papel estéril (30 minutos). A continuación, se llevó a cabo el montaje de las muestras en cámaras húmedas previamente lavadas y desinfectadas con hipoclorito al 2.5% y etanol al 70%, se adicionaron 150 ml de agua destilada estéril, se dispusieron las muestras en servilletas estériles sobre una rejilla y se sellaron las cámaras con papel vinipel durante siete días a temperatura ambiente. Pasado el tiempo, se procedió a realizar la lectura en microscopio de las estructuras formadas sobre la superficie de las muestras contenidas en las cámaras húmedas, seguidamente, se llevó a cabo el proceso de siembra de las estructuras en medio PDA (Potato Dextrose Agar) y KOMADA (para Fusarium spp.) en cabina de flujo laminar y los repiques correspondientes. Para el aislamiento de bacterias se tomaron muestras de órganos afectados (ramas y hojas) durante el desarrollo de las evaluaciones fitosanitarias. El proceso de desinfección del material vegetal consistió en lavados con agua destilada estéril (1 minuto), hipoclorito al 2.5% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto), etanol al 70% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto) y para finalizar secado en toallas de papel estéril (30 minutos). Posteriormente, se procedió a realizar cortes estériles de las hojas y pecíolos previamente seleccionados, utilizando tijeras de disección desinfectadas con etanol al 70% y flameadas para evitar contaminación cruzada. Estos fragmentos vegetales fueron transferidos a tubos de ensayo que contenían solución salina estéril al 0,85% (NaCl). La suspensión se dejó reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente, con agitación ocasional, con el fin de favorecer el desprendimiento de los microorganismos epifíticos y endofíticos presentes en la superficie del material vegetal hacia el medio líquido. Una vez transcurrido el tiempo de contacto, se procedió a realizar una dilución seriada decimal de la solución, transfiriendo 1 mL de la suspensión inicial a un tubo con 9 mL de solución salina estéril para obtener una dilución 10⁻¹. Este procedimiento se repitió sucesivamente hasta alcanzar una dilución final de 10⁻⁶, con el objetivo de reducir la carga microbiana y facilitar el aislamiento individual de colonias bacterianas. Cada dilución se homogenizó adecuadamente mediante agitación manual y/o un vórtex antes de proceder a la siguiente. Posteriormente, utilizando un asa bacteriológica de punta redonda, previamente esterilizada por flameado, se sembró en una caja Petri que contenía agar nutritivo sólido, empleando la técnica de agotamiento por estría en zigzag sobre toda la superficie del medio, para favorecer la separación de colonias bacterianas individuales. La caja Petri se rotó cuidadosamente para distribuir la muestra de manera uniforme y evitar acumulación en un solo sector. Las placas inoculadas se incubaron a temperatura ambiente (entre 25°C y 30°C) durante un período de 24 a 48 horas en condiciones aerobias, protegidas de la luz directa, transcurrido este tiempo, se observaron las placas para identificar el crecimiento bacteriano, caracterizando las colonias formadas en cuanto a su morfología, color, borde, elevación y otras características macroscópicas, con el fin de seleccionar aquellas de interés para posteriores pruebas bioquímicas o de identificación molecular. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","relatedProjects":[],"abstract":"El proyecto Desarrollo de estrategias de manejo integrado del cultivo de mango para incrementar la competitividad del sistema productivo en el departamento del Magdalena, tiene como objetivo desarrollar alternativas tecnológicas con enfoque regional para incrementar la competitividad del cultivo del mango en el departamento del Magdalena."},"samplingDescription":{"studyExtent":"Los muestreo se realizaron desde mayo del 2022 hasta diciembre del 2024, en lotes de mango de fincas de productores en los municipios de Ciénaga (11,01492786; -74,22383421), Zona Bananera (10,77409143; -74,14791050) y Santa Marta (11,22040900; -74,11199700). Se colectaron 101.361 artrópodos distribuidos en dos clases la Arachnida y la insecta, 15 órdenes y 45 familias, y se obtuvieron 164 aislamientos que corresponden a cinco clases Dothideomycetes, Sordariomycetes, Alphaproteobacteria, Bacilli y Gammaproteobacteria, 8 ordenes, 9 familias y 10 géneros.","sampling":"El proyecto Desarrollo de estrategias de manejo integrado del cultivo de mango para incrementar la competitividad del sistema productivo en el departamento del Magdalena se seleccionaron lotes de mango en 5 fincas de productores en los municipios de Ciénaga (3 fincas), Zona Bananera (6 lotes del Centro de Investigación Caribia) y Santa Marta (1 finca).\n\nLa colecta de insectos plaga en hoja y rama se hizo de forma directa. Por otro lado, en las inflorescencias se utilizó la técnica de golpeteo sobre una hoja blanca, para realizar la colecta de trips. Los especímenes fueron colectados en tubos Eppendorf y tubos Falcon con alcohol al 70% y en bolsas de papel. En cuanto a los frutos, se revisó el estado general, y si presentaban perforaciones por mosca de la fruta, se colectaban debidamente rotulados y se disponían en cajas de cría en laboratorio. La colecta de mosca de la fruta se realizó de forma directa en trampas McPhail con Cebofrut (proteína hidrolizada y borizada de maíz) y  recambio cada 8 días. La colecta de termitas se hizo de forma directa en el tronco y ramas, con una pinza punta plana y tubos Eppendorf con alcohol al 70%; se colectaron soldados y en el nido la reina. El muestreo de las hormigas se realizó al árbol en general, teniendo en cuenta la presencia y daño; la colecta se realizó igual que con las termitas. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Entomología del C. I. Caribia.\n \nCon relación al aislamiento de microorganismos, se tomaron muestras de órganos afectados (ramas, tallos, hojas, inflorescencias y frutos) y se llevó a cabo el proceso de desinfección del material vegetal que consistió en lavados con agua destilada estéril (1 minuto), hipoclorito al 2.5% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto), etanol al 70% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto) y para finalizar secado en toallas de papel estéril (30 minutos). A continuación, se llevó a cabo el montaje de las muestras en cámaras húmedas previamente lavadas y desinfectadas con hipoclorito al 2.5% y etanol al 70%, se adicionaron 150 ml de agua destilada estéril, se dispusieron las muestras en servilletas estériles sobre una rejilla y se sellaron las cámaras con papel vinipel durante siete días a temperatura ambiente. 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Caribia.","El monitoreo de las hormigas se realizó al árbol en general, teniendo en cuenta la presencia y daño; la colecta se realizó de forma directa en el tronco y ramas con una pinza punta plana y tubos Eppendorf con alcohol al 70%. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Entomología del C. I. Caribia.","El aislamiento de microorganismos, se realizó con muestras de órganos afectados (ramas, tallos, hojas, inflorescencias y frutos) y se llevó a cabo el proceso de desinfección del material vegetal que consistió en lavados con agua destilada estéril (1 minuto), hipoclorito al 2.5% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto), etanol al 70% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto) y para finalizar secado en toallas de papel estéril (30 minutos).  El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Se realizó el montaje de las muestras en cámaras húmedas previamente lavadas y desinfectadas con hipoclorito al 2.5% y etanol al 70%, se adicionaron 150 ml de agua destilada estéril, se dispusieron las muestras en servilletas estériles sobre una rejilla y se sellaron las cámaras con papel vinipel durante siete días a temperatura ambiente. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Se realizó la lectura en microscopio de las estructuras formadas sobre la superficie de las muestras contenidas en las cámaras húmedas. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Se realizó la siembra de las estructuras en medio PDA (Potato Dextrose Agar) y KOMADA (para Fusarium spp.) en cabina de flujo laminar y los repiques correspondientes. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Algunas muestras de artrópodos y microorganismos fueron enviados a la red de Laboratorios de Diagnóstico Fitosanitario del ICA, para su determinación taxonómica.","Para el aislamiento de bacterias se tomaron muestras de órganos afectados (ramas y hojas) durante el desarrollo de las evaluaciones fitosanitarias. El proceso de desinfección del material vegetal consistió en lavados con agua destilada estéril (1 minuto), hipoclorito al 2.5% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto), etanol al 70% (3 minutos), agua destilada estéril (1 minuto) y para finalizar secado en toallas de papel estéril (30 minutos). El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Posteriormente, se procedió a realizar cortes estériles de las hojas y pecíolos previamente seleccionados, utilizando tijeras de disección desinfectadas con etanol al 70% y flameadas para evitar contaminación cruzada. Estos fragmentos vegetales fueron transferidos a tubos de ensayo que contenían solución salina estéril al 0,85% (NaCl). La suspensión se dejó reposar durante 30 minutos a temperatura ambiente, con agitación ocasional, con el fin de favorecer el desprendimiento de los microorganismos epifíticos y endofíticos presentes en la superficie del material vegetal hacia el medio líquido. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Una vez transcurrido el tiempo de contacto, se procedió a realizar una dilución seriada decimal de la solución, transfiriendo 1 mL de la suspensión inicial a un tubo con 9 mL de solución salina estéril para obtener una dilución 10⁻¹. Este procedimiento se repitió sucesivamente hasta alcanzar una dilución final de 10⁻⁶, con el objetivo de reducir la carga microbiana y facilitar el aislamiento individual de colonias bacterianas. Cada dilución se homogenizó adecuadamente mediante agitación manual y/o un vórtex antes de proceder a la siguiente. El procesamiento de las muestras se llevó a cabo en el Laboratorio de Fitopatología del C.I Caribia.","Posteriormente, utilizando un asa bacteriológica de punta redonda, previamente esterilizada por flameado, se sembró en una caja Petri que contenía agar nutritivo sólido, empleando la técnica de agotamiento por estría en zigzag sobre toda la superficie del medio, para favorecer la separación de colonias bacterianas individuales. La caja Petri se rotó cuidadosamente para distribuir la muestra de manera uniforme y evitar acumulación en un solo sector. 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